Содержание к диссертации
Введение
1. Обзор литератуты 8
1.1 Общая характеристика нематод семейства анизакид 8
1.2 Географическое распространение и эпизоотическая ситуация 11
1.2.1 Распространение и встречаемость личинок Anisakis у рыб 15
1.3 Биология развития рода Anisakis 17
1.3.1 Дифференциальная диагностика личинок Anisakis simplex, Pseudoterranova decipiens, Contracaecum osculatum 20
1.3.2 Заражение людей личинками рода Anisakis 21
2. Материалы и методы исследований 29
3. Результаты собственных исследований 40
3.1 Органоморфометрические особенности путассу северной (Micromesistius poutassou), сельди атлантической (Clupca barengus), хамсы черноморской (Engraulis encrasicholus ponticus), минтая (Theragra), мойвы (Mallotus villosus) 40
3.2 Паразитологические исследования путассу, минтая, сельди, хамсы и мойвы 46
3.3 Органолептические исследования рыб 47
3.4 Определение качества мяса рыб 49
3.5 Определение продуктов первичного распада белков в экстракте мышц рыб 54
3.6 Бактериоскопические и химико-токсикологические исследования проб рыб: путассу, минтая, сельди, хамсы и мойвы...65
3.7 Влияние степени инвазии личинками АшзаИэ на концентрацию связанных и свободных аминокислот в вытяжке мышечной ткани различных видов рыб 69
3.8 Влияние степени инвазии личинками АшзаЫз на образование летучих органических веществ в вытяжке мышечной ткани различных видов рыб 95
3.9 Влияние различных режимов хранения рыбы путассу на образование в мышцах свободных аминокислот, аминов и катионов 108
3.10 Профилактические мероприятия, проводимые при анизакидозе рыб 116
Заключение 118
Выводы и предложения производству 132
Список литературы 135
Приложения 157
- Географическое распространение и эпизоотическая ситуация
- Паразитологические исследования путассу, минтая, сельди, хамсы и мойвы
- Определение продуктов первичного распада белков в экстракте мышц рыб
- Влияние степени инвазии личинками АшзаИэ на концентрацию связанных и свободных аминокислот в вытяжке мышечной ткани различных видов рыб
Введение к работе
Актуальность работы. Высокая заражённость рыб спиралевидными личинками Anisakis и промысловых беспозвоночных резко ухудшает их товарное качество, что приводит к значительным экономическим потерям. Заражению личинками Anisakis подвержены не только человек, но и ценные пушные звери при искусственном выращивании и другие полезные животные, для корма которых используют свежую морскую рыбу.
Медицинское и народно-хозяйственное значение имеют представители родов Anisakis, Contracaecum, Goezia, Histerothylacium, Porrocaecum, Pseudo-terranova из семейства Anisakidae. Они являются патогенными как для человека, так и для животных, негативно влияют на переработку и реализацию рыбы и морепродуктов (А.В. Гаевская, 2005; M.D. Valero, 2000).
Для организации успешной борьбы с анизакидозом и предотвращения заражения человека и животных, необходимо применять своевременные методы исследования и распознавания гельминтов, что позволяет осуществить постановку точного диагноза гельминтоза, которая служит началом всей цепи оздоровительных мероприятий (Н.Л. Бурджанадзе,1937).
Исходя из того, что анизакидоз является широко распространенным заболеванием среди морских рыб семейства тресковые, сельдевые и корюшко-вые, используемых человеком в пищу, весьма актуальным является изучение влияния личинок Anisakis на качество рыбной продукции.
Цель и задачи исследования. Целью данной работы было проведение исследований по усовершенствованию ветеринарно-санитарнои экспертизы рыбы при заражении ее возбудителями анизакидоза, направленной на повышение качества и безопасности рыбной продукции.
Для достижения намеченной цели были поставлены следующие задачи:
Изучить степень распространенности анизакидоза рыб и его медико-ветеринарное значение.
Провести органолептические, лабораторно-диагностические исследования мышечной ткани и внутренних органов здоровой рыбы и пораженной личинками Anisakis.
Определить динамику оптической плотности экстракта мышечной ткани рыбы, в зависимости от степени инвазии личинками Anisakis.
Изучить эффективность метода капиллярного электрофореза для определения качественных показателей рыбы при анизакидозе и избыточного аутолиза при нарушении температурного режима ее хранения.
Определить концентрацию летучих органических веществ в вытяжке мышечной ткани при анизакидозе.
Научная новизна. Впервые изучены и установлены параметры изменения биохимических показателей мышечной ткани при анизакидозе рыб. Установлено, что в мышечной ткани при анизакидозе образуются и накапливаются свободные аминокислоты, летучие органические вещества. Усовершенствованы лабораторные методы исследований с целью повышения информативности показателей качества рыбы. Обоснована теоретическая и практическая необходимость проведения исследований на капиллярном электрофорезе «Капель 103-Р» и газо-жидкостном хроматографе «Кристалл 2000-М» для установления качества и безопасности рыбы при анизакидозе.
Практическая значимость диссертационной работы состоит в объективной оценке качества и безопасности рыбы при анизакидозе вследствие установления в мышечной ткани дегенеративных изменений, не допущении использования для пищевых целей интенсивно пораженной рыбы. Эти сведения могут быть использованы в практике для контроля качества рыбы, а также в курсах лекций по токсикологии и ветеринарно-санитарной экспертизе с основами технологии и стандартизации продуктов животноводства.
Практическая значимость результатов исследований состоит в усовершенствовании лабораторных методов исследований, позволяющих давать наиболее объективную оценку качества рыбы при паразитарных заболеваниях.
Разработаны учебные пособия и методические рекомендации: «Вете-ринарно-санитарная экспертиза промысловой рыбы и рыбных продуктов», «Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса убойных животных», «Санитарно-гигиенические требования к холодильным камерам, технологическим процессам и хранению пищевых продуктов».
Апробация работы. Основные положения и результаты диссертации доложены и обсуждены на IV Международном симпозиуме (Санкт-Петербург, 2008); на научной конференции молодых ученых, аспирантов, студентов и специалистов (Троицк, 2008); на научных и методических конференциях факультета ветеринарной медицины КубГАУ (Краснодар, 2006-2009).
Публикации результатов исследований. По материалам диссертации издано 4 научных работы, опубликованных в рекомендуемых Высшей аттестационной комиссией журналах: Труды Кубанского государственного аграрного университета - 1. В материалах IV международного симпозиума (Санкт-Петербург) - 2. В материалах конференции молодых ученых, аспирантов, студентов и специалистов (Троицк) - 1. Методические рекомендации (Краснодар)-3.
Основные положения, выносимые на защиту
1. Зараженность различных видов рыб возбудителями анизакидоза.
Особенности изменения физико-химических показателей мышечной ткани рыб.
Влияние степени зараженности рыбы анизакидами на концентрацию связанных и образование свободных аминокислот, накопление летучих органических веществ в вытяжке мышечной ткани.
Эффективность использования капиллярного электрофореза «Капель 103-Р» и газового хроматографа «Кристалл 2000-М» с целью установления качества и безопасности рыбы при анизакидозе и нарушении температурного режима хранения.
Объем и структура диссертации. Диссертационная работа изложена на 157 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, материалов собственных исследований, заключения, выводов, предложений производству, списка литературы и приложений. Работа иллюстрирована 24 таблицами, 8 рисунками. Список литературы включает 226 источников, в том числе 161 зарубежных авторов.
Географическое распространение и эпизоотическая ситуация
Семейство Anisakis распространено практически по всему земному шару, представителей которых находят в арктических и антарктических водах, в умеренных широтах и тропическом поясе, в морских и океанических водоёмах. Однако в пределах самого семейства для одних родов и видов характерен широкий ареал, распространение других ограничено небольшими акваториями (территориями). Это обусловлено как особенностями биологии и распространения хозяев этих нематод, так и особенностями биологии и экологии, а также специфичностью самих паразитов, т.е. их приуроченностью к определённому виду или к группе видов хозяев (A. Daschner, F. Vega de La Osada, C.Y. Pascual, 2005; A. Levsen, B.T. Lunestad, В. Berland, 2005).
Обширный ареал характерен для представителей родов Anisakis, Соп- tracoecum, Histerothylacium, Pseudoterranova, у отдельных родов довольно узкий ареал, например, род Belanisakis известен только в Индии. Также широко распространены многие виды анизакид: Anisakis simplex, Contracaecum oscu- latum, С. ormorhini, Pseudoterranova decipiens. Масштаб географиеского распространения Anisakis зависит от присосибленности их к разным видам хозяев. Таким образом, Pseudoterranova krabbe, выделенный из Pseudoterranova decipiens, оказался приурочен только к Северо-Восточной Атланктике, где он паразитирует у северного тюленя, реже у обыкновенного тюленя (T.L. Deardorff, M.L Kent, 1989; S. D Amelio e.a., 1994; V.V. Besprozvannykh, A.V. Ermolenko, V.D. Kamnev, 2004).
Медицинское и народно-хозяйственное значение Anisakis зависит от эпизоотической ситуации: от района лова и популяции рыб, места лова — прибрежное мелководье или более отдаленные районы моря. Отмечены относительно плавные, но высокоамплитудные колебания в инвазированности рыб личинками Anisakis при наблюдениях в течение ряда лет (A.A. Шевцов, 1981; В.В. Горохов, 1999; A.B. Гаевская, 2005; M.D. Valero, 2000; A. Armentia e.a., 2004; R. Bernardini е. а., 2005; W. Saito е. а., 2005; D. Solz Gonzlez e. a., 2006).
В Северном море за восемь лет наблюдений инвазированность рыб личинками Anisakis повысилась в 3-5 раз. Так, если инвазированность в 1960-1963 годах была 15%, то в 1971-1973 годах возросла до 50%, особенно в северной части моря (R. Wootten, J.W. Smith, 1975).
Высокая пораженость морской рыбы паразитами в отдельных случаях приводит к тому, что она оказывается непригодной для пищевых целей, что при водит к значительному экономическому ущербу. У инвазированной рыбы отмечен и малый выход деликатесного сырья - печени (A.C. Довгалев и др., 1998).
В акватории Атлантики патогенными для человека являются личинки Anisakis simplex, Anisakis sp., Anisakis larva, LI,2 личиночные формы нематод этого рода из рыб и промысловых беспозвоночных Pseudoterranova de- cipiens (Terranova decipiens, Phocanema decipiens), Pseudoterranova larva type A, Contracaecum osculatum, Contracaecum larva type В. В Северной Атлантике обнаружены следующие группы рыб окончательных хозяев: в Белом море — тресковые, в Черном — сельдиевые, группа рыб «основных хозяев» среди дальневосточных рыб не выявлена (H.H. Найденова, В.М. Николаева, 1964; Т.Н Попова, Е.Д. Вальтер, 1967; В.М. Николаева, 1970; Т.А. Гроздило- ва, 1976; Т.Н. Мордвинова, 2001; С. Jarling, Н. Kapp, 1985; М. Podolska, 1995; R. Cabrera е.а., 2003).
Фауна личинок Anisakis в северной части Тихого океана и Северной Атлантики полностью совпадает. Инвазируются лососевые палтусы, треска, терпуг, ряд камбал, путассу (до 100%) и другие виды. Эпизоотическая ситуация по этой инвазии во многом зависит от непредсказуемых колебаний внешней среды и опосредованного воздействия человека (J. Boje, 1987; F. Boily, DJ. Marcogliese, 1995; R.B. Blaylock, 2003).
В России почти не освоены запасы креветок в Охотском море, и в числе их паразитов могут быть Anisakis sp., larva LI; Н. aduncum larva L3, L4 (В.П. Быков, И.Е. Зюзин, А.Д. Кушалиева, 2002). У рыб в Тихом океане обнаружены 12 видов Anisakis и два вида паразитируют в съедобных частях промысловых моллюсков (З.Б. Малышева, 1988; Г.Ф. Соловьева, 1989).
Паразитологические исследования путассу, минтая, сельди, хамсы и мойвы
При паразитологическом исследовании рыб нами были выявлены спиралевидные личинки рода Anisakis, вида Anisakis simplex.
При исследовании путассу были выявлены личинки Anisakis в количестве от 1 до 63 (экстенсивность инвазии 100% при интенсивности от 1-го до 63-х экземпляров), в сельди — от 10 до 42 (экстенсивность инвазии 100% при интенсивности от 10-ти до 42-х экземпляров), хамсе — от 0 до 27, минтае — от 1 до 8, мойве — от 0 до 8 экземпляров.
Личинки Anisakis в рыбе (в путассу, минтае, сельди, хамсе и мойве) обычно локализовались в полости тела и практически на поверхности внутренних органов - брыжейке, печени, гонадах, пилорических придатках, в стенке желудка, а также внутри гонад, в плавательном пузыре; у некоторых проб рыб (хамса) наблюдали гидремию мускулатуры.
Личинок нематод, паразитирующих в полости тела, на внутренних органах рыб обнаруживали при вскрытии. Для этого вскрывали полость тела рыбы ножницами, разрезали брюшко от анального отверстия к голове и вырезали одну часть брюшной стенки. Далее перерезали пищеварительный тракт от пищевода до анального отверстия, стараясь не повредить целостность внутренних органов. Кишечник препарировали с осторожностью во избежание выпадения из него пищевых компонентов и обитающих в нём нематод. Под лупой тщательно осматривали полость вскрытой рыбы. Внутренние органы, включая гонады и печень, помещали в чашки Петри, тщательно просматривая каждый орган отдельно сначала невооружённым глазом, а затем под бинокулярным микроскопом. Личинки Ani- sakis чаще всего были свёрнуты в плоские спирали и заключены в тонкую прозрачную капсулу.
Для обнаружения личинок Anisakis, локализующихся в мышечной ткани рыб, первоначально снимали кожу и проверяли подкожную клетчатку на наличие нематод. Затем мышцы надрезали в виде поперечных ломтиков толщиной не более 1 см сначала с одной стороны тела, а затем с другой. Надрезы делали под косым углом к позвоночнику рыбы. Каждый ломтик просматривали в ярком падающем свете невооружённым глазом. При таком осмотре в мышечных тканях достаточно хорошо были видны как свободные нематоды, так и цисты с нематодами. Обнаруживали личинки A. simplex спиралевидной формы в виде широкого кольца, или вытянутые в прозрачных капсулах или без них, беловатого или желтоватого цвета, цисты диаметром от 1,5 мм до 5 мм, толщиной от 1 мм до 1,5 мм. Личинки, извлеченные из цист, имели размеры от 15,3 мм до 24,4 мм в длину, с толщиной тела 0,4-0,9 мм. Передний конец личинок, свернутых внутри капсулы, был направлен к наружной стороне спирали. Кутикула имела тонкую поперечную исчерченность, губы личинок были незаметные. У A. simplex экскреторная пора расположена на головном конце тела, у основания губ — ниже вентрально ориентированного личиночного зуба расположен прямой или изогнутый короткий конический хвост, заканчивающийся острым ку- тикулярным выступом — мукроном; желудочные или кишечные отростки отсутствовали.
Определение продуктов первичного распада белков в экстракте мышц рыб
С целью установления первичного распада белков в мясе рыбы нами была проведена качественная реакция с бензидином на активность фермента пероксидазы. С помощью перекиси водорода пероксидазы катализируют окисление различных веществ, включая фенолы.
Свободное окисление протекает при участии свободнорадикальных форм кислорода, которые образуются в процессе одноэлектронного восстановления кислорода и, прежде всего, супероксид-аниона кислорода.
Образование супероксид-аниона кислорода имеет важное биологическое значение. Он является высокореакционным соединением, которое вследствие высокой гидрофильности не может покидать клетку и накапливаться в цитоплазме. Его превращения приводят к образованию ряда активных окислителей. Супероксид-анион кислорода активирует Ж)-синтетазу, которая образует в тканях МЭ-радикал, обладающий свойствами вторичного посредника (активирует растворимую гуанилатциклазу, продукт которой — цГМФ - проявляет вазодилататорные свойства). С другой стороны, супероксид-анион способен снижать содержание МО-радикала, превращая его в пе- роксинитрит 01"Ю0Н, который может индуцировать так называемый апоптоз (запрограммированная гибель клеток), а в ходе своего спонтанного распада превращается в гидроксил-радикал.
Живые клетки имеют системы защиты от повышенной продукции свободных радикалов. Фермент супероксиддисмутаза превращает супероксид- анион кислорода в менее реакционноспособный и более гидрофобный перок- сид водорода Н2О2. Пероксид водорода является субстратом каталазы и глу- татионзависимых пероксидаз, которые катализируют его превращение в молекулу воды.
Проведение качественной реакции на пероксидазу (бензидиновая проба) позволило установить, что вытяжка из жаберной ткани свежих рыб давала синюю окраску, переходящую за 1—2 минуты в коричневую, сомнительной свежести — менее интенсивную окраску и значительно позже переходила в коричневую (через 3-4 минуты). Вытяжка из жаберной ткани несвежей рыбы не давала синей окраски, а непосредственно переходила в коричневый цвет (отрицательная реакция на пероксидазу).
Пероксидаза была слабоактивной при инвазии путассу от одной до двух спиралевидных личинок АгпБаклБ, мышечная ткань при этом окрашивалась в синий цвет, который через две-три минуты переходил в коричневую окраску. Напротив, пероксидаза была неактивной при инвазии путассу от 9 до 13 и от 20 до 36 личинок АшБаклэ, и экстракт окрашивался в бледно-синий цвет, который через три-четыре минуты переходил в коричневую окраску. При инвазии путассу от 44 до 63 личинок АшБаклэ экстракт мышечной ткани сразу приобретал коричневую окраску.
При инвазии минтая от одной до двух личинок АшБаклэ пероксидаза была слабоактивной, экстракт мышечной ткани окрашивался в бледно-синий цвет, через две-три минуты переходил в коричневый. Напротив, пероксидаза была неактивной при инвазии минтая от 7 до 8 личинок АгаБаЙБ, экстракт мышечной ткани окрашивался в бледно-синий цвет, через три-четыре минуты переходил в коричневую окраску.
При установлении активности фермента пероксидазы результаты показали, что экстракт мышечной ткани сельди при инвазии от 10 до 14 спиралевидных личинок Ахша&Б, окрашивался в синий цвет, который через две-три минуты переходил в коричневый. При инвазии сельди от 15 до 20 личинок АшБаЙБ экстракт окрашивался в бледно-синий цвет, который через три- четыре минуты переходил в коричневый. При инвазии сельди от 31 до 42 личинок АшБаклэ, экстракт мышечной ткани сразу приобретал коричневую окраску (реакция отрицательная).
Определение активности пероксидазы показало, что экстракт мышечной ткани хамсы, не пораженной личинками АшБак Б, окрашивался в интенсивно синий цвет, который через 0,5—1 минуты переходил в коричневый (реакция положительная). При инвазии хамсы от 1 до 4 личинок АшБаНз экстракт окрашивался в бледно-синий цвет, который через три-четыре минуты переходил в коричневый. При инвазии хамсы от 21 до 27 личинок АшБакаэ, экстракт мышечной ткани сразу приобретал коричневую окраску (реакция отрицательная).
Активность пероксидазы была установлена у не пораженной мойвы, при этом экстракт мышечной ткани окрашивался в интенсивно синий цвет, через 1-2 минуты переходящий в коричневую окраску. У рыбы, пораженной от 4 до 8 личинок АхшаЫБ, пероксидаза была неактивной, экстракт мышечной ткани окрашивался в бледно-синий цвет, через три-четыре минуты переходящий в коричневый.
Таким образом, нами установлено, что независимо от степени инвазии исследуемых рыб личинками АшБакав, активность фермента пероксидазы была отрицательной.
Ориентировочное определение общей бактериальной обсемененности мышц рыбы проводили редуктазной пробой. Данный метод основан на способности бактерий в процессе жизнедеятельности выделять фермент редук- тазу (дегидразу), обесвечивающий органический краситель — метиленовый голубой. Редуктазы ускоряют реакции отнятия водорода (донор) от определенных органических веществ (акцептор) и передают его на промежуточные соединения. Чем быстрее происходило обесцвечивание экстракта мышц рыбы, к которой был добавлен метиленовый голубой, тем больше содержалось в ней фермента редуктазы, следовательно, и больше микроорганизмов, его продуцирующих.
Влияние степени инвазии личинками АшзаИэ на концентрацию связанных и свободных аминокислот в вытяжке мышечной ткани различных видов рыб
Выявление концентрации- связанных аминокислот в вытяжке мышечной ткани у различных видов рыб при инвазии личинками АшБаЫз имеет важное значение для установления качества и безопасности продукта. Высокая концентрация связанных аминокислот свидетельствует об отсутствии- процессов распада белков мышечной ткани.
Нами была определена концентрация связанных аминокислот (аргинин, лизин; тирозин, фенилаланин, гистидин, лейцин, метионин, валин, пролин, треонин, триптофан, серин, а-аланин, глицин) у рыб (путассу, минтай, сельдь, хаема, мойва)? в зависимости от степени их инвазии личинками Ат Нами была исследована, вытяжка мышечной1 ткани путассу, полученные от инвазированной личинками АгшаИБ рыбы, содержащих от одной до двух, от 9 до 13 и от 44 до 63 личинок. С увеличением инвазии рыбы было. установлено снижение концентрации связанных аминокислот. Так, при инвазии путассу личинками АтваНз от 9 до 13 концентрация связанных аминокислот снижалась» следующим образом: аргинина и фенилаланина - в 1,1 раза; лизина, лейцина, метионина, пролина, треонина, триптофана и а- аланина - 1,2 раза; валина и тирозина - в 1,3 раза; серина - в 1,5 раза; глици- наа - в 1,7 раза и, напротив, повышение гистидина в 1,1 раза, относительно пораженной путассу от одной до двух личинок АшБаклБ (табл. 6).
При инвазии путассу от 20 до 36 личинок АтзаЫз концентрация связанных аминокислот снижалась следующим образом: а-аланина - в 1,1 раза; гистидина, триптофана - в 1,2 раза; аргинина и фенилаланина — в 1,3 раза; лизина, лейцина, метионина, валина, пролина — в 1,4 раза; тирозина и треонина - в 1,6 раза; глицина - в 1,8 раза; серина — в 2 раза, относительно пораженной путассу от одной до двух личинок АшБак Б (табл. 6).
При инвазии путассу от 44 до 63 личинок АшБак Б концентрация связанных аминокислот снижалась следующим образом: валина — в 1,3 раза; а-аланина — в 1,4 раза; аргинина, лизина и фенилаланина — в 1,5 раза; гисти- дина, лейцина - в 1,6 раза; глицина и пролина — в 1,7 раза; метионина — в 1,8 раза; треонина и тирозина - в 1,9 раза; триптофана - в 2 раза; серина — в 2,5 раза, относительно пораженной путассу от одной до двух личинок Аш- заЫБ.
Общая концентрация связанных аминокислот в вытяжке мышечной ткани путассу, пораженной от одной до двух личинок, составила 143332,32 мг/кг рыбы, при инвазии от 9 до 13 личинок АшБа Б — 117059,46 мг/кг рыбы, при инвазии от 20 до 36 - 98655,25 мг/кг рыбы, при инвазии от 44 до 63 — 83363,16 мг/кг рыбы (табл. 6, рис. 6).
Среди всех связанных аминокислот в вытяжке мышечной ткани путассу максимальная процентная концентрация приходилась на тирозин (3943%), а-аланин (10-12%), треонин (9-11%), гистидин (4-5%), и, напротив, минимальная - на лизин (0,20-0,30%), триптофан (015,-0,20%).
Нами были проведены исследования вытяжки мышечной ткани минтая, полученного от инвазированной рыбы, содержащей от одной до двух и от 7 до 8 личинок АшБаИБ. С увеличением инвазии рыбы было установлено снижение концентрации связанных аминокислот. Так, при инвазии минтая личинками АшБак Б от 7 до 8 концентрация связанных аминокислот снижалась следующим образом: аргинина - в 1,1 раза; лизина, гистидина, лейцина, треонина, а-аланина —1,2 раза; глицина - в 1,3 раза; фенилаланина, валина, пролина, серина — в 1,4 раза; метионина - в 1,3 раза; триптофана — в 1,7 раза; тирозина - в 1,7 раза, относительно пораженного минтая от одной до двух личинок АшзаЫБ (табл. 7).
Общая концентрация связанных аминокислот в вытяжке мышечной ткани минтая, пораженного от одной до двух личинок, составила 178348,57 мг/кг рыбы, при инвазии от 7 до 8 личинок АшБаИБ — 129248,31 мг/кг рыбы (табл. 7, рис. 6).
Среди всех связанных аминокислот в вытяжке мышечной ткани минтая, пораженного от одной до двух личинок, максимальная процентная концентрация приходилась на тирозин (30-37%), а-аланин (12-14%), треонин (9-11%), метионин (7-8%), лейцин (6-8%), гистидин (4—5%), и, напротив, минимальная - на триптофан (0,22-0,25%), лизин (0,19-0,21%).
При исследовании вытяжки мышечной ткани сельди, полученной от ин- вазированной личинками АшБаклэ в количестве от 10 до 14, от 15 до 20 и от 31 до 42 личинок установлено, что с увеличением инвазии в рыбе происходило снижение концентрации связанных аминокислот. Так, при инвазии сельди личинками АшБаклБ от 15 до 20, концентрация связанных аминокислот снижалась: метионина и триптофана — 1,2 раза; пролина — в 1,3 раза; а-аланина, валина, глицина и серина - в 1,5 раза; гистидина, лейцина и тирозина - в 1,6 раза; аргинина и треонина - в 2 раза; лизина — в 2,2 раза, фенилаланина — в 3 раза относительно пораженной сельди от 10 до 14 личинок АшБаЫБ (табл. 8).
При инвазии сельди от 31 до 42 личинками АшБак Б концентрация связанных аминокислот снижалась: метионина - в 1,1 раза; пролина и триптофана — в 1,2 раза; а-аланина, серина и тирозина - в 1,4 раза; валина, глицина и лейцина - в 1,5 раза; гистидина - в 1,6 раза; треонина - в 1,9 раза; аргинина — в 2,2 раза; фенилаланина — в 2,8 раза; лизина — в 3,5 раза относительно пораженной сельди от 10 до 14 личинок АшБаклэ (табл. 8).
