Содержание к диссертации
Введение
II. Обзор литературы 9
2.1. Влияние жеребости на обменные процессы в организме кобыл 9
2.1.1. Влияние жеребости на показатели белкового и азотистого обменов в крови кобыл 9
2.1.2. Влияние жеребости на показатели углеводного и жирового обменов в крови кобыл 14
2.1.3. Влияние жеребости на показатели минерального обмена в крови кобыл 23
2.1.4. Влияние жеребости на показатели антиоксидантной защиты кобыл 35
2.1.5. Влияние жеребости на состояние иммунной системы кобыл 38
Собственные исследования 41
3.1. Материалы и методы 41
3.2. Динамика иммуно-биохимических показателей крови жеребых кобыл в зависимости от месяца жеребости 46
3.2.1. Динамика показателей белкового и азотистых обменов в
зависимости от месяца жеребости 46
3.2.2. Динамика показателей липидного обмена в сыворотке крови в зависимости от месяца жеребости 50
3.2.3. Динамика показателей углеводного обмена в зависимости от месяца жеребости 52
3.2.4. Динамика показателей минерального обмена в зависимости от
месяца жеребости
3.2.5. Динамика показателей активности ферментов в зависимости от месяца жеребости 55
3.2.6. Динамика показателей пигментного обмена в зависимости от месяца жеребости 56
3.2.7. Динамика показателей антиоксидантной защиты в зависимости от месяца жеребости 57
3.3. Иммунологические показатели крови жеребых
кобыл 60
3.4. Динамика гематологических показателей крови жеребых кобыл в зависимости от месяца жеребости 64
3.5. Влияние препарата «Гемобаланс» на метаболизм жеребых кобыл
3.5.1. Профилактика железодефицитной анемии у жеребых кобыл 66
3.5.2. Профилактика нарушений минерального обмена у жеребых кобыл 67
3.5.3. Профилактика развития окислительного стресса у жеребых кобыл 67
3.5.4. Влияние препарата «Гемобаланс» на концентрацию общего белка и
его фракций в сыворотке крови жеребых кобыл 71
3.5.5. Влияние препарата «Гемобаланс» у жеребых кобыл на
гематологические, иммуно-биохимические показатели крови жеребят 74
IV. Обсуждение полученных результатов 81
V. Выводы 107
VI. Практические предложения 108
VII.cnhcok
Литературы
- Влияние жеребости на показатели углеводного и жирового обменов в крови кобыл
- Влияние жеребости на состояние иммунной системы кобыл
- Динамика показателей липидного обмена в сыворотке крови в зависимости от месяца жеребости
- Профилактика нарушений минерального обмена у жеребых кобыл
Введение к работе
Актуальность темы. На протяжении тысячелетий лошадь остаётся верным спутником и помощником человека. Трудно назвать другое животное, чьё значение для нас было бы столь велико. Уже более четырех десятилетий общая численность лошадей в мире остаётся стабильной и составляет 65 млн. голов (Ливанова Т.К., 2003). При этом экономически развитые страны постоянно наращивают поголовье лошадей: так в США их начитывается уже более 12 млн.; в России же, по неполным данным, их пока всего около 2 млн.(Пэворд Т., 2005). Рост их численности происходит полностью за счёт увеличения количества лошадей спортивного назначения и лошадей для личного непроизводственного использования. Наряду с использованием лошадей в сельском хозяйстве во внутрихозяйственном транспорте, при пастьбе скота, обслуживании индивидуальных подсобных хозяйств, больше стал развиваться конный спорт, прокат лошадей и конный туризм. Эти животные продолжают играть важную роль в развитии эстетического вкуса, физической культуры и здоровья людей (Стекольников А.А., 2009). В последние годы организм лошади изучается на уровне молекулярной генетики (Bayly W., 1999; Жигачев А.И. и др., 2008).
Лошади также используются в качестве продуцентов в биологической и медицинской промышленности. Актуальным в коневодстве является дальнейшее увеличение поголовья лошадей и повышение продуктивности животных (Жаров А.В. и др., 2007). За 30 лет произошли коренные изменения в ветеринарном обслуживании коневодства, разработаны новые средства и методы осуществления ветеринарных мероприятий, внедрены новые технические средства. Появился востребованный рынок ветеринарных услуг, систематически повышается рыночный спрос на эти услуги (Гутовец А.Ю., 2008).
Коневодство наряду с широким развитием прочной кормовой базы, включает в себя получение жизнеспособного потомства, что во многом обусловлено условиями содержания и кормления жеребых кобыл (Виденин В.Н., 1998; Зеленевский Н.В., 1996; Калашников В.В., 2011). Беременность – физиологический процесс, который в организме самки обусловливает ряд явлений, граничащих с патологическим процессом (Племяшов К.В., Баженова Н.Б., 2006). Развитие плода во многом зависит от состояния матери и всякое усиление или ослабление функций органов материнского организма оказывает коррелятивное влияние на состояние плода (Васильева С.В., Конопатов Ю.В., 2009).
Изучение обмена веществ у лошадей в период жеребости является актуальной темой, что предполагает подбирать наиболее рациональные схемы кормления жеребых кобыл, обусловливая тем самым, возможность получения жизнеспособного потомства.
Цель и задачи исследования. Целью исследования являлось комплексное изучение иммуно-биохимических характеристик организма жеребых кобыл в зависимости от месяца жеребости и научное обоснования профилактической эффективности применения комплексного препарата «Гемобаланс» для фармакокоррекции нарушений обмена веществ, наблюдающихся у лошадей при жеребости.
Для достижения поставленной цели были решены следующие задачи: изучить гематологические, биохимические показатели крови жеребых кобыл и их жеребят, отражающие состояние белкового, липидного, углеводного и минерального обменов; изучить состояние иммунной системы у жеребых кобыл в зависимости от месяца жеребости; изучить состояние антиоксидантной системы у жеребых кобыл в зависимости от месяца жеребости; научно обосновать профилактическую эффективность применения комплексного препарата «Гемобаланс» для возможных фармакокоррекции возможных нарушений обмена веществ у жеребых кобыл; изучить влияние данного препарата на иммуно-биохимические характеристики организма жеребят.
Научная новизна. В ходе исследований впервые проведено комплексное изучение состояние белкового, азотистого, жирового и углеводного обменов у жеребых кобыл в зависимости от месяца жеребости; изучен антиоксидантный статус организма жеребых кобыл в зависимости от месяца жеребости; иммунный статус организма жеребых кобыл в зависимости от месяца жеребости; научно обосновано применение препарата «Гемобаланс» для коррекции возможных нарушений обмена веществ у жеребых кобыл; проведена оценка влияния применения препарата «Гемобаланс» у жеребых кобыл на состояние потомства.
Теоретическая и практическая значимость работы. Выполненное исследование содержит решение актуальной проблемы – выяснения особенностей иммуно-биохимического статуса, метаболизма микро- и макроэлементов, состояния антиоксидантной системы у жеребых кобыл в зависимости от месяца жеребости. Предложен эффективный способ фармакокоррекции нарушений обмена веществ, возникающих при жеребости с использованием препарата «Гемобаланс». Полученные данные дают возможность объективно интерпретировать иммуно-биохимические показатели крови лошадей с учетом срока жеребости. Действие препарата «Гемобаланс» на иммуно-биохимический статус организма жеребых кобыл позволяет рекомендовать данный препарат для профилактики нарушений обмена веществ у жеребых кобыл на поздних сроках жеребости.
Основные положения, выносимые на защиту:
-
Динамика изменений гематологических и иммуно-биохимических характеристик крови жеребых кобыл в зависимости от месяца жеребости;
-
Влияние комплексного препарата «Гемобаланс» на биохимический статус и естественную резистентность организма жеребых кобыл;
-
Оценка применения препарата «Гемобаланс» у жеребых кобыл на состояние потомства.
Апробация результатов исследования. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на: 56 международной научно-практической конференции (Белая церковь, 2008); объединенном иммунологическом форуме (Санкт-Петербург, 2008); международной научной практической конференции, посвященной 200-летию высшего ветеринарного образования в России (Санкт-Петербург, 2008); XVII Московском Международном ветеринарном конгрессе (Москва, 2009); международной научно-практической конференции «Достижения и перспективы животноводства» (Витебск, 2009); 4-ом Международном симпозиуме «Современные проблемы и методы экологической физиологии и патологии млекопитающих, введенных в зоокультуру» (Петрозаводск, 2009); III Съезде фармакологов и токсикологов России (Санкт-Петербург, 2011); XIV Всероссийский научный Форум с международным участием имени академика В.И.Иоффе (Санкт-Петербург, 2011); 62,64,65 научных конференциях молодых ученых и студентов СПбГАВМ (Санкт-Петербург, 2008, 2010, 2011); научных международных конференциях профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ (Санкт-Петербург, 2010, 2011).
Публикации. По теме диссертации опубликовано 11 печатных работ, 4 из которых в рецензируемых журналах, рекомендованных ВАК Российской Федерации для публикации результатов диссертационных работ.
Внедрение результатов исследований. Результаты исследований реализованы в практике обучения студентов по дисциплинам биологическая химия, физиология, акушерство на факультете ветеринарии ФГБОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины», а также в лечебно-профилактической деятельности практикующих врачей Ленинградской области и города Санкт-Петербурга, специализирующихся по болезням лошадей.
Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 131 страницах машинописного текста и содержит введение, обзор литературы, материалы и методы исследования, результаты собственных исследований, обсуждение результатов, выводы, практические предложения, список использованной литературы, включающий 207 источников, из них 51 иностранных. Работа иллюстрирована 27 таблицами.
Влияние жеребости на показатели углеводного и жирового обменов в крови кобыл
Во время жеребости происходит активация всех метаболических процессов, чтобы обеспечить растущие потребности плода, плаценты, матки, а также базальный уровень метаболизма матери. В процессе развития данного процесса происходит интенсификация белкового обмена и накопление белковых субстанций в организме для обеспечения растущего плода и жизнедеятельности организма матери пластическим материалом (Кузовлева Л.В., 2002; Алексеев Н.Д., 2002).
Во второй половине жеребости в организме животного отмечается накопление белковых веществ, даже их избыточность, но лишними они не будут, поскольку затем компенсируют расход белковых веществ, связанных с родами и лактацией (Григорьева Т.Е., 1994).
Лошадь относится к моногастричным травоядным животным, это означает, что они не имеют рубца, в отличие от овец и крупного рогатого скота, в рубце которых присутствуют бактерии, способствующие утилизации растительных волокон (Лаковников Е.А., 2007). Однако лошадь имеет относительно большую слепую кишку, бактериальная микрофлора которой переваривает растительные вещества (Рудаков В.В. и др., 1991; Скопичев В.Г., Максимюк Н.Н., 2004). Потребность лошади, в кормовом белке определяется качеством белка и его перевариваемостью (National Research Council, 1989). Белки, которые не используются в построении тканей организма, могут использоваться в качестве источника энергии. Лошадь может синтезировать некоторые аминокислоты (заменимые). Другие аминокислоты (лизин, метионин, триптофан, валин, гистидин и фенилаланин) являются незаменимыми и должны присутствовать в корме. Главным участком пищеварительной системы, в котором происходит расщепление белка, начинающееся в желудке, является тонкая кишка. Аминокислоты, которые всасываются, это аминокислоты рациона, не подвергшиеся воздействию бактерий. Однако, вероятно, имеет место и всасывание аминокислот бактериального происхождения из толстой кишки лошади. Тем не менее результаты некоторых работ показали, что бактериальные аминокислоты, синтезированные в толстой кишке, не подвергаются эффективной утилизации в организме лошади (Wysocki А.А., 1976; Baker J.M. et al., 1999).
Лошади с повышенными потребностями в белке (например, жеребята и жеребые кобылы) проявляют особую зависимость от поступления незаменимых аминокислот. Жеребята обычно рождаются по существу агаммаглобулинемичными, только с небольшим количеством IgM, обнаруживаемого в их сыворотке (Федоров Ю.Н., Верховский О.А., 1996). У новорожденных жеребят происходит всасывание интактных аминокислот в течение 36 часов после рождения. Важно, чтобы жеребенок получил молозиво как можно скорее после своего появления на свет. В молозиве содержатся материнские антитела (иммуноглобулины), которые обеспечивают защиту организма жеребенка от инфицирования. Отсутствие материнских антител у новорожденных препятствует борьбе организма с инфекционными агентами, с которыми он сталкивается в ранней жизни (Федоров Ю.Н., Верховский О.А., 1996). Через плаценту не происходит передача антител. Нарушение пассивной передачи материнских антител может иметь место у любого вида домашнего животного, но наиболее документировано у лошадей. Сообщения показывают, что нарушения передачи материнских антител могут достигать у 24 % жеребят ( Thompson J.P., 1995, Agrfcola R., et al., 2008).
Для жеребых племенных кобыл обычный энергетический уровень остается достаточным вплоть до последних 90 дней беременности, когда происходит развитие большей части тканей внутриутробного плода ( 60-65 %). В этот период энергетические потребности повышаются примерно в 1,5 раза, и соотношение ПКБ:ЭУК должно составлять 6-7 г на МДж. Содержание белка в молоке достигает наивысшего значения сразу после родов (рождения жеребят) и постепенно снижается в период лактации. С другой стороны, повышается выработка молока, поэтому общие потребности в белках остаются постоянными на протяжении первых двух месяцев периода лактации (Робинсон Э., 2007).
Основными факторами, оказывающими влияние на рост молодых лошадей, является потребление белка и энергии (Конопатов Ю.В., 1996; Hulten C.R. et al., 1999). Дневные потребности в белке характеризуются наибольшими значениями в первый месяц жизни (ГЖБ:ЭУК равно 10 г на МДж , а затем немного снижается ( 6 г на МДж ). В первые 8 месяцев жизни обеспечение организма незаменимыми аминокислотами имеет особо важное значение (Burger I.N., 1997; Kalinowski D.S., Richardson D.R., 2005).
Однако у жеребых кобыл отмечены следующие особенности в метаболизме. У жеребых кобыл происходит накопление азота, который необходим как матери, так и плоду. Количество остаточного азота в крови не увеличивается, а мочевины выделяется меньше, чем у нежеребых.
Milinkovicur S. et al., 2005, для изучения метаболизма белка в период жеребости и ранней лактации кобыл определяли в плазме крови уровень общего белка и альбумина, активность аспартатаминотрансферазы (ACT), аланинаминотрансферазы (АЛТ) и гамма-глютамилтрансферазы (ГГТ). Исследованиями не установлено существенной разницы по уровню общего белка, альбумина, активности АЛТ и ГТТ в изучаемые физиологические периоды. В последней трети жеребости снижалась активность ACT, по сравнению с начальным (Р 0,01) и средним (Р 0,001) периодами. По данным авторов Czernomysy-Furowicz D., Furowicz J., 2001, в опыте были 40 кобыл за 6 недель до родов. Общее количество белка в плазме крови составляло 73,3 г/л, альбумина - 35,2 г/л. Unanian М.М. et al., 1999, установили, что с течением жеребости уровень общего белка в крови значительно увеличивался, уровень альбумина снижался. Отношение альбумин: белок в течение жеребости было постоянным.
Влияние жеребости на состояние иммунной системы кобыл
Креатинин в сыворотке крови определяли фотоколориметрическим методом с пикриновой кислотой с использованием промышленных наборов НПЦ «ЭкоСервис». В основе набора - метод Яффе (Кондрахин И.П., 2004).
Концентрацию глюкозы в сыворотке крови определяли энзиматическим колориметрическим методом с использованием промышленных наборов НПФ «Абрис+». В основе метода -«глюкозооксидазный» метод по Триндеру (Тиц Н.У., 1997).
Концентрацию пировиноградной кислоты (ПВК) в крови определяли колориметрическим модифицированным методом по Фреедману и Хаугену (Кондрахин И.П., 2004).
Содержание молочной кислоты в сыворотке крови определяли энзиматическим методом с использованием наборов реактивов фирмы «БиоМерье» (Камышников B.C., 2003).
Концентрацию холестерина сыворотки крови определяли энзиматическим колориметрическим методом с использованием промышленных наборов НПФ «Абрис+» (Тиц Н.У., 1997).
Концентрацию триглицеридов в сыворотке крови определяли колориметрическим методом с использованием промышленных наборов НПФ «Абрис+» (Тиц Н.У., 1997). Определение активности супероксиддисмутазы (СОД) в сыворотке крови определяли по методу торможения восстановления нитросинего тетразоля в присутствии НАД Н2 (Кондрахин И.П., 2004). Определение активности каталазы в крови проводили методом перманганатометрии по Баху А.Н. и Зубкову С.З. (Конопатов Ю.В. и др., 1994). Определение активности глутатионпероксидазы в крови определяли при помощи реактива Эллмана (Кондрахин И.П., 2004). Определение концетрации малонового диальдегида (МДА) проводили колориметрическим методом с тиобарбитуровой кислотой (Камышников B.C., 2003). Определение концентрации диеновых конъюгатов (ДК) и диенкетонов проводили с использованием колориметричекого метода Плацера и др., 1976 (Камышников B.C., 2003). Определение иммуноглобулинов (Ig) проводили методом осаждения сульфатом цинка (Холод В.М., Ермолаев Г.Ф., 1988). Бактерицидную активность сыворотки крови (БАСК) определяли фотоэлектроколориметрическим методом по Смирновой О.В., Кузьминой Т.П. (1979). Лизоцимную активность сыворотки крови определяли фотоэлектроколориметрическим методом по Дорофейчуку В.Г. ( 1968). Циркулирующие иммунные комплексы (ЦИК) определяли методом преципитации, используя 3,5% раствор полиэтиленгликоля (Меньшиков В.В., 1987).
Показатели фагоцитоза изучали микроскопическим методом с использованием культуры стафилококка штамма 209, инактивированной нагреванием и стандартизированной с использованием оптического стандарта мутности (Скопичев В.Г., Максимюк Н.Н., 2009).
Концентрацию кальция в сыворотке крови определяли колориметрическим методом с применением диагностического набора НПФ «Абрис+». В основе метода - реакция с реагентом Арсеназо III (ТицН.У., 1997).
Концентрацию фосфора в сыворотке крови определяли колориметрическим методом с применением диагностического набора НПФ «Абрис+». В основе метода - реакция с молибдатом аммония (ТицН.У., 1997).
Концентрацию магния в сыворотке крови определяли колориметрическим методом с применением диагностического набора НПФ «Абрис+». В основе метода - реакция с ксилидиловым синим (Тиц Н.У., 1997).
Концентрацию калия в сыворотке крови определяли колориметрическим методом с применением диагностического набора НПФ «Абрис+». В основе метода - реакция с тетрафенилбората натрия (Тиц Н.У., 1997).
Концентрацию меди в сыворотке крови определяли колориметрическим методом с применением диагностического набора НПФ «Абрис+». В основе метода - реакция с реагентом 3,5-di-Br-РАЕ8А(Тиц Н.У., 1997).
Концентрацию железа в сыворотке крови определяли колориметрическим методом без депротеинизации с применением диагностического набора НПФ «Абрис+». В основе метода - реакция с реагентом Nitro-PAPS (Тиц Н.У., 1997).
Концентрацию общей железосвязывающей способности сыворотки крови (ОЖСС) определяли методом с использованием основного карбоната магния с применением диагностического набора НПФ «Абрис (Тиц Н.У., 1997). Латентную железосвязывающую способность (ЛЖСС) и насыщение трансферрина железом определяется по соответствующим формулам.
Динамика показателей липидного обмена в сыворотке крови в зависимости от месяца жеребости
При этом значительно угнетается функциональное состояние нейтрофилов крови (особенно хемотаксис и бактерицидность по отношению к грамотрицательной и кокковой флоре), а также синтез АФК макрофагами. Сформировавшийся при беременности иммунный статус (угнетение фагоцитоза нейтрофилов и макрофагов, гиперфункция Т-супрессоров) приводит прежде всего к повышенной восприимчивости к вирусной (грипп, гепатит, полиомиелит) и бактериальной (особенно стрептококковая) инфекции. Несмотря на это, следует помнить, что любые попытки воздействия на иммунную систему беременных могут существенно осложнить беременность или стимулировать выкидыш и, следовательно, нецелесообразны и даже опасны. Таким образом, во время жеребости отмечается развитие вторичного иммунодефицита (Пэворд Т., 2005).
Анемия - патологическое состояние, сопровождаемое снижением уровня гемоглобина и эритроцитов в единице объема крови, соответственно, снижением гематокрита, отражающего общий объем форменных элементов в крови (Стекольников А.А., Веремей Э.И., 2010). Поскольку железо является структурным компонентом гемоглобина и миоглобина (Flogel U. et al., 2001; Kalinowski D.S., Rihardson D.R., 2005), а также ряда ферментов, участвующих в синтезе коллагена; при развитии железодефицитного состояния в организме происходят соответствующие изменения.
Наши результаты подтверждаются исследованиями Головаха В.И., Пиддубника О.В., 2007, которые установили, что с возрастом у лошадей уменьшается общее количество эритроцитов.
Особенностью развития анемий у лошадей является то, что эритроциты остаются в костном мозге до полного созревания, даже при тяжелой анемии и интенсивном эритропоезе. Поэтому периферические признаки регенерации эритроцитов, обычно наблюдаемые у других видов животных, такие как ретикулоцитоз, макроцитоз, анизоцитоз, полихромазия, тельца Хауэлла-Жолли, базофильная пунктуация и ядерные эритроциты, редко обнаруживаются у лошадей (Риган В., 2000). При нашем исследовании было выявлено, что у жеребых кобыл с течением жеребости наблюдается снижение концентрация гемоглобина (таблица 13). Достоверное снижение отмечалось, начиная с 10 месяца, к этому сроку концентрация гемоглобина снизилась, относительно максимальной на 30%, к 11 месяцу на 34% (р 0,05). Анализ динамики количества эритроцитов (таблица 13) позволяет сделать вывод, что количество эритроцитов меняется в зависимости от месяца жеребости. Так максимальное количество отмечается в первые месяцы жеребости, снижение количества относительно максимальных значений в начале жеребости составляет к 4 месяцу снижается на 6%, достоверное (р 0,05) снижение отмечается, начиная с 8 месяца; к этому сроку количество эритроцитов снижается относительно максимальной величины на 25%, к 11 месяцу на 42%. Относительно значений контрольной группы также наблюдалось достоверное снижение данного показателя после 8-го месяца: так содержание эритроцитов на сроке жеребости 8 месяце было снижено на 25%, на сроке жеребости 9 месяцем - на 31%, на 10 месяце жеребости - на 36%, на 11 месяце жеребости на - 42% (р 0,05). Максимальная величина цветового показателя отмечалась в конце жеребости. Данное увеличении не носило достоверный характер (р 0,05) и составляло 13% относительно минимальных значений в начале жеребости и 14% относительно значений контрольной группы.
Таким образом, начиная с 7-8 месяца и до 11 месяца жеребости наблюдалось достоверное снижение концентрации гемоглобина в 1,4 раза, эритроцитов в 1,7 раза.
Концентрация железа в сыворотке крови также зависела от месяца жеребости (таблица 14). Максимальные концентрации данного микроэлемента отмечены в начале жеребости (30,04±4,13 мкмоль/л), минимальные на 11 месяце жеребости (22,60±1,34 мкмоль/л), достоверное снижение (р 0,05) относительно максимальных значений в начале жеребости и значений контрольной группы наблюдалось, начиная с 10 месяца жеребости, и составило в 10 месяцев 19%, в 11 месяцев- 24%.
Динамика ОЖСС и ЛЖСС в крови зависела от месяца жеребости, достигая своего максимума на 11 месяце. Так концентрация ОЖСС увеличилась, относительно значений контрольной группы к 11 месяцу жеребости на 27% , ЛЖСС в 5,1 раза (р 0,05).
Насыщение трансферрина железом зависит у жеребых кобыл от месяца жеребости (таблица 14). Концентрация данного белка в сыворотке крови снижалась на протяжении всей жеребости, достигая своего минимума на 11 месяце (р 0,05). Увеличение составило: железа в 1,3 раза; увеличение ОЖСС в 1,35 раза, цветного показателя в 1,2 раза ЛЖСС в 5,1 раза, насыщение трансферрина железом снизилось в 1,6 раза относительно аналогичных значений у животных контрольной группы.
Профилактика нарушений минерального обмена у жеребых кобыл
Таким образом, оценка биохимических характеристик крови, характеризующих развитие анемии у лошадей, является важным критерием при постановке диагноза. Компоненты, входящие в состав «Гемобаланса», являются источником энергетического обмена в клетке, участвуют в кроветворных процессах, нормализуют формулу крови и содержание гемоглобина в крови, способствуют насыщению крови кислородом, оказывают иммуномодулирующее действие, восстанавливают функцию печени и способствуют восстановлению мышц (Племяшов К.В., 2007; Салаутин В.В., Зирук И.В., Кудинов А.В. и др., 2010; Нечаев Т.А., 2010).
Использование препарата в представленной схеме привело к повышению концентрации гемоглобина (таблица 15) спустя 30 дней после приема препарата. Так если до применения препарата концентрация гемоглобина в крови подопытной группы кобыл составляла 79,09±6,21 г/л, то после применения препарата концентрация гемоглобина была равна 110,70±7,87 г/л, или повысилась на 28,60 % (р 0,05).
В этот же период исследования концентрация гемоглобина в крови контрольной группы была равна 81,00±10,3 г/л, или ниже на 26,80 %. Параллельное определение количества эритроцитов в крови жеребых кобыл после применения препарата спустя 30 дней оказалось достоверно повышенным (р 0,05).В контрольной группе в этот же период исследований количество эритроцитов было достоверно ниже на 30,70 % (р 0,05). Повышение концентрации гемоглобина сопровождалось значительным повышением степени насыщения железом трансферрина (с 62 % до 82 %) (Карпенко Л.Ю., Андреева А.Б., Вахта А.А., 2009). Известно, что после всасывания железо в крови животного связывается с (3-глобулином-трансферрином и в таком виде циркулируют в организме (Рахмедов Ч.Р., 1986), в том числе активно поступает в процесс гемопоэза.
Следовательно, повышенная концентрация гемоглобина и количества эритроцитов до верхней физиологической границы в крови жеребых кобыл под влиянием препарата свидетельствует о положительном эффекте данного препарата в процессе гемопоэза. Под влиянием препарата отмечено повышение биохимических показателей до верхней физиологической границы.
Повышение концентрации общего железа в сыворотке крови (таблица 16) под влиянием препарата, по-нашему мнению, указывает на эффективное использование железа аммония цитрата, присутствующего в составе «Гемобаланс» (Андреева А.Б., Вахта А.А., Карпенко Л.Ю., 2011). Дополнительным подтверждением нашего мнения явилось увеличение насыщения трансферрина железом в крови жеребых кобыл под влиянием препарата на 24,40 % ( Андреева А.Б., 2009). Под влияние препарата выявлено достоверное повышение концентрации общего кальция (таблица 16) с 1,50±0,27 ммоль/л до 3,33±0,51 ммоль/л (р 0,05). При этом концентрация фосфора в сыворотке крови имела тенденцию к повышению с 1,31 ±0,66 ммоль/л до 1,97±0,64 ммоль/л (Андреева А.Б., 2010). Концентрация общего кальция в сыворотке крови кобыл контрольной группы оставалась достоверно ниже по сравнению с показателем крови кобыл подопытной группы. Концентрация меди (таблица 16) в сыворотке крови жеребых кобыл подопытной группы после применения препарата повысилась в 1,4 раза (р 0,05), что объясняется присутствием в составе препарата меди сульфата (Карпенко Л.Ю., Андреева А.Б, 2007).
После использования препарата «Гемобаланс» в качестве корректора основных обменов веществ в организме жеребых кобыл логично было определить состояние этих обменов в крови у жеребят контрольной и подопытной групп.
В сыворотке крови односуточных жеребят контрольной группы концентрация общего белка (таблица 21) была достоверно ниже по сравнению с показателями жеребят подопытной группы (р 0,05). При этом достоверно большей оказалась концентрация у-глобулинов в сыворотке крови жеребят подопытной группы, по сравнению с контролем (Андреева А.Б., 2011). Известно, что у-глобулиновая фракция общего белка рассматривается как фракция иммуноглобулинов. ( Болотников И.А. и др., 1983; Пол У., 1988). Под влиянием препарата у жеребят подопытной группы концентрация гемоглобина повысилась на 23,4 % (р 0,05), по сравнению с показателями жеребят контрольной группы (таблица 22).
Таблица 23 показывает, что отношение кальция и фосфора жеребят подопытной и контрольной группы сыворотки крови, как и абсолютные концентрации этих элементов не имели достоверных различий (р 0,05). Концентрация магния в сыворотке крови жеребят подопытной группы была достоверно выше, по сравнению с контролем (р 0,05).
Концентрация общего билирубина и его фракции сыворотки крови жеребят подопытной группы не имели достоверных различий по сравнению с контрольной группой жеребят. Это свидетельствует о том, что препарат не оказывал негативное влияние на функцию печени.
Подтверждение этого мнения является уровень активности таких ферментов как АсАт, АлАТ. Активность этих ферментов сыворотки крови жеребят подопытной группы не имела достоверных различий по сравнению с контролем. Известно, что активность данных ферментов в определенной степени отражает функцию печени (Меньшиков В.В., 1987).
Таким образом, выполненное нами комплексное исследование влияния препарата «Гемобаланс» на основные обмены организма жеребых кобыл, свидетельствует о положительном стимулирующим эффекте данного препарата на течение жеребости.
